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明膠酶譜分析試劑盒為什么老出不了條帶,看過來!

更新時(shí)間:2018-10-17      瀏覽次數(shù):3211

明膠酶譜分析試劑盒為什么老出不了條帶,看過來!

很多老師反應(yīng)在操作明膠酶譜試劑盒的時(shí)候,有時(shí)候很難出現(xiàn)漂亮的條帶,信帆生物為您答疑解惑!

如果您對基質(zhì)金屬蛋白酶MMP2,MMP9感興趣,歡迎找上海信帆生物科技有限公司!

1.樣本失活

2.電泳操作不對,配膠不均,有氣泡,溫度控制不當(dāng)?shù)取?/span>

3.孵育時(shí)間不夠。由于某些樣本活性太低,孵育時(shí)間不夠,很難出現(xiàn)漂亮的條帶。

 

我們在明膠酶譜分析試劑盒時(shí)候的注意事項(xiàng):

1.制備聚丙烯酰胺時(shí)應(yīng)注意排除氣泡。

2.明膠酶譜的活性受鈣離子,鋅離子,和PH值等因素的影響,因此緩沖液配制應(yīng)嚴(yán)格準(zhǔn)確,盡量用超純水,孵育溫度也掌握好。

3.用大梳子

4.孵育液的PH在7.5-7.6,復(fù)性的TRITON時(shí)間長了會有絮狀物,所以實(shí)驗(yàn)時(shí)盡量使用新鮮配置的。

5.孵育的37度不要在CO2培養(yǎng)箱中,因?yàn)闀淖兎跤旱腜H值,在普通孵箱即可。

明膠酶譜分析試劑盒檢測步驟:

1 制備含MMP底物蛋白的SDS-PAGE凝膠:推薦分離膠濃度為8%。按照標(biāo)準(zhǔn)程序制備SDS PAGE凝膠。將10 × substrate G 融化,并90 ºC 加熱5分鐘。分別在濃縮膠和分離膠中額外加入10 × substrate G 并使之稀釋10倍,混勻后加入過硫酸銨和TEMED,等待凝膠聚合。

2 待測樣品1:1 稀釋于2 × SDS-PAGE non-reducing buffer (用完后可自行配制:4% SDS, 100 mM Tris-Cl  pH6.8, 20% glycerol, 0.02% bromophnol blue),混合后直接上樣。切勿加熱變性,并且僅使用不加還原劑的上樣緩沖液??赏ㄟ^預(yù)試驗(yàn)確定加樣量,使用普通蛋白預(yù)染Marker 即可。陽性對照(可選步驟):可取人、小鼠、大鼠或兔100μl 全血與100μl 2 × SDS-PAGE nonreducing buffer 等體積混合,取5-15μl 上樣。

3 低電流恒流電泳,每一塊小膠電流為20 mA/gel。溴酚藍(lán)跑出凝膠前沿時(shí)結(jié)束電泳。

4 洗滌凝膠:取出凝膠,去除濃縮膠,放入容器內(nèi)。可先用適量蒸餾水沖洗凝膠,然后加入10 ml 1× Buffer A(用蒸餾水稀釋),室溫漂洗凝膠2 × 30 分鐘。中間換液。

5 孵育:倒掉Buffer A。加入10 ml 1× Buffer B(蒸餾水稀釋),室溫或37ºC 孵育1~5 小時(shí)。陽性對照或者血中的MMP 通常37ºC 孵育1 小時(shí)即可顯示。如MMP 活性低,應(yīng)延長孵育時(shí)間為10小時(shí)或過夜。

6 顯色:倒掉Buffer B,加入SDS-PAGE凝膠蛋白質(zhì)考馬斯亮藍(lán)染色液(操作步驟見后面所附SDS-PAGE凝膠蛋白質(zhì)考馬斯亮藍(lán)染色液說明書)。凝膠的大部分區(qū)域被深染,在有MMP 條帶的位置不被染色而形成透亮區(qū)域。透明區(qū)域的位置和范圍指示MMP-2、MMP-9 的大小位置(酶譜)及活性。陽性對照將在66~72 (MMP-2)、92 (MMP-9)、130 (proMMP-9)、225 (proMMP-9) kDa位置出現(xiàn)透明條帶。

7 條帶掃描:將凝膠放在掃描儀上掃描。雖然MMP條帶透明,但凝膠背景并非真正全黑。解決辦法:可用非透射光掃描,或用軟件圖像處理程序調(diào)整背景顯示為灰度顯示,并盡量設(shè)置為黑色。MMP 條帶則為白色,這種背景黑條帶白的格式是英文論文中zui常見的格式。

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?附上一張條帶圖:

 

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